Здоровье человека

Лечение, диагностика и профилактика

  • Full Screen
  • Wide Screen
  • Narrow Screen
  • Increase font size
  • Default font size
  • Decrease font size

Основы сестринского дела часть 3 - КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ (АЗОПИРАМ)

E-mail Print PDF
Смотрите так же...
Основы сестринского дела часть 3
ДЕЗИНФЕКЦИЯ
МЕТОДЫ ДЕЗИНФЕКЦИИ
НОВЫЕ ДЕЗИНФИЦИРУЮЩИЕ И АНТИСЕПТИЧЕСКИЕ ПРЕПАРАТЫ
ПРИНЦИПЫ РАЦИОНАЛЬНОГО ОБОРУДОВАНИЯ РАБОЧЕГО МЕСТА СТУДЕНТА
ПРИЕМ ПАЦИЕНТА
ПРИЕМ И РЕГИСТРАЦИЯ ПАЦИЕНТОВ
ДОЛЖНОСТНЫЕ ОБЯЗАННОСТИ МЕДСЕСТРЫ ПРИЕМНОГО ОТДЕЛЕНИЯ
ИНФЕКЦИОННАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ ПРИЕМНОГО ОТДЕЛЕНИЯ
ДЕЗИНСЕКЦИЯ
ТРАНСПОРТИРОВКА ПАЦИЕНТА В ОТДЕЛЕНИЕ
ЛЕЧЕБНОЕ ОТДЕЛЕНИЕ ЛПУ. УСТРОЙСТВОЛЕЧЕБНОГО ОТДЕЛЕНИЯ. ЛЕЧЕБНО-ОХРАНИТЕЛЬНЫЙ РЕЖИМ.
ЛЕЧЕБНОЕ ОТДЕЛЕНИЕ ЛПУ
САНИТАРНО-ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЙ РЕЖИМ ОТДЕЛЕНИЯ
ЛЕЧЕБНО ОХРАНИТЕЛЬНЫЙ РЕЖИМ ЛПУ
ПЕРЕДАЧА ДЕЖУРСТВ
ДОЛЖНОСТНЫЕ ОБЯЗАННОСТИ ПАЛАТНОЙ МЕДСЕСТРЫ
ИНФЕКЦИОННАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ. ИНФЕКЦИОННЫЙ КОНТРОЛЬ.
СОБЛЮДЕНИЕ ПРИНЦИПОВ ЛЕЧЕБНО-ОХРАНИТЕЛЬНОГО РЕЖИМА
ПРОЦЕДУРНЫЙ КАБИНЕТ
ПРАВИЛА ТЕХНИКИ БЕЗОПАСНОСТИ МЕДСЕСТРЫ ПРОЦЕДУРНОГО КАБИНЕТА
ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННАЯ ОЧИСТКА
КОНТРОЛЬ КАЧЕСТВА ПРЕДСТЕРИЛИЗАЦИОННОЙ ОЧИСТКИ (АЗОПИРАМ)
ДЕЗИНФЕКЦИЯ И УТИЛИЗАЦИЯ
ИНФЕКЦИОННАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ ИНФЕКЦИОННЫЙ КОНТРОЛЬ
СТЕРИЛИЗАЦИЯ
ЦСО
ИНФЕКЦИОННАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ. ИНФЕКЦИОННЫЙ КОНТРОЛЬ. ВИЧ ИНФЕКЦИЯ.
ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ
ВОЗМОЖНЫЕ ПУТИ ИНФИЦИРОВАНИЯ МЕДРАБОТНИКОВ
ИНСТРУКЦИЯ ПО ПРОТИВОЭПИДЕМИЧЕСКОМУ РЕЖИМУ В ЛАБОРАТОРИЯХ ДИАГНОСТИКИ
ВОЗМОЖНЫЕ ПУТИ ИНФИЦИРОВАНИЯ ПАЦИЕНТОВ
БЕЗОПАСНАЯ БОЛЬНИЧНАЯ СРЕДА. РЕЖИМ РАЦИОНАЛЬНОЙ ДВИГАТЕЛЬНОЙ АКТИВНОСТИ.
ВИДЫ РЕЖИМОВ ДВИГАТЕЛЬНОЙ (ФИЗИЧЕСКОЙ) АКТИВНОСТИ
ЦЕЛИ НАЗНАЧЕНИЯ ПОСТЕЛЬНОГО РЕЖИМА
БИОМЕХАНИКА
БИОМЕХАНИКА В МЕДИЦИНЕ
ПОЛОЖЕНИЯ ПАЦИЕНТА В ПОСТЕЛИ
БЕЗОПАСНАЯ БОЛЬНИЧНАЯ СРЕДА. ЛЕЧЕБНО-ОХРАНИТЕЛЬНЫЙ РЕЖИМ ЛПУ
ТЕОРЕТИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ
ЛЕЧЕБНО-ОХРАНИТЕЛЬНЫЙ РЕЖИМ
РЕЖИМ ЭМОЦИОНАЛЬНОЙ БЕЗОПАСНОСТИ
СПОСОБЫ АДАПТАЦИИ К СТРЕССАМ
ПРАВИЛА ВНУТРЕННЕГО РАСПОРЯДКА И ВЫПОЛНЕНИЯ МАНИПУЛЯЦИЙ
МЕТОДЫ СНИЖЕНИЯ РИСКА ЭЛЕКТРОТРАВМ
All Pages

Контроль качества предстерилизационной очистки изделий для меди­цинского назначения с помощью реактива АЗОПИРАМА Методические указания от 26 мая 1988 г. Ленинград 1988 г.

I. Общая часть

1.  Проба с азопирамом по чувствительности не уступает бензидино-вой и в 10 раз превышает амидопириновую.

2.  С введением данных указаний бензидиновая и ортотолуидиновая пробы отменяются.

3.  Реактив азопирам используется для выявления открытых следов крови, которые могли остаться на подготовленных к стерилизации меди­цинских изделиях в результате недостаточно тщательной предстерилиза­ционной очистки.

4.  Контроль предстерилизационной очистки проводит СЭС 1 раз в квартал. Самоконтроль в ЛПУ проводится не реже 1 раза в неделю, орга­низуется и контролируется старшей медсестрой отделения.

II.  Методика определения качества предстерилизационной очистки изделий с помощью реактива АЗОПИРАМА

1. Реактивы: амидопирин в порошке, солянокислый анилин, 3% пере­кись водорода, 95% этиловый спирт, вода дистилированная. Вода исполь­зуется для приготовления 3% перекиси водорода.

2. Приготовление исходных растворов.

На 1 л раствора отвешивают 100 г амидопирина и 1,0-1,5 г солянокис­лого анилина. Вещества смешивают в сухой посуде и заливают 95% эти­ловым спиртом до объема 1 л. Смесь тщательно перемешивают палочкой до полного растворения всех ингредиентов. Таким образом, азопирам со­держит 10% амидопирина, 0,10-0,15% солянокислого анилина, остальное -95% этиловый спирт.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытых флаконах в темноте при температуре 4 °С (в холодильнике) 2 месяца, в темноте при комнатной температуре 18-23 °С не более месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабо­чих качеств.

При небольшом объеме исследований азопирам готовят порциями по 50-200 мл. Окислителем в реакции индикации является 3% перекись водо­рода,                                                                                                   

III. Приготовление рабочего раствора

Непосредственно перед проверкой качества очистки изделий готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3% перекиси водорода.

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяется в случае не­обходимости: 2-3 капли этого раствора наносят на кровяное пятно. Если не позже, чем через 1 минуту, появляется фиолетовое окрашивание, пере­ходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению. Если окрашивание в течение 1 минуты не появляется, реактивом пользоваться нельзя.

IV. Исследование качества предстерилизационной очистки изделий Методика постановки реакции.

Рабочим раствором (азопирам с 3% перекисью водорода в соотноше­нии 1:1) обрабатывают исследуемые изделия: протирают тампонами, смо­ченными реактивом, или наносят несколько капель реактива на исследуе­мые изделия с помощью пипетки.

В шприцы наливают 3-4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю по­верхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где ча­ще всего остается кровь, реактив в шприце оставляют на 0,5-1,0 минуту, после чего реактив вытесняют на марлевую салфетку.

При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый шприц и, последовательно меняя иглы, пропускают реактив через них, вы­давливая 3-4 капли на марлевую салфетку. Контролю подвергают 1% от одновременно обработанных изделий одного наименования, но не менее 3-5 единиц.

V. Индикация загрязнений

В присутствии следов крови немедленно или не позднее, чем через минуту после контакта реактива с загрязненным участком, появляется окрашивание вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких се­кунд переходящее в розово-сиреневое или буроватое.

Окрашивание, наступившее позже чем через 1 минуту после обработ­ки исследуемых предметов, не учитывается.

Азопирам выявляет наличие гемоглобина, пероксидаз растительного происхождения, окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка и других), а также ржавчины и кислот.

Буроватое окрашивание наблюдается при наличии на исследуемых предметах ржавчины и хлорсодержащих окислителей. В остальных случа­ях окрашивание розово-сиреневое.    

VI. Особенности реакции

Исследуемые изделия должны иметь комнатную температуру. Нельзя подвергать проверке горячие изделия, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре.

Рабочий раствор (азопирам с перекисью водорода) должен быть ис­пользован в течение 1-2 часов. При более длительном стоянии может по­явиться спонтанное розовое окрашивание раствора. Если это окрашивание мешает работе, а исследование необходимо продолжить, следует заменить порозовевший раствор свежим.

После проверки, независимо от ее результатов, следует удалить остатки азопирама с исследованных изделий, обмыв их водой или проте­рев тампоном, смоченным водой или спиртом, а затем повторить предсте-рилизационную очистку этих изделий.

VII. Меры предосторожности

Среди реактивов, использующихся при приготовлении и применении азопирама, осторожного обращения требуют солянокислый анилин, пер­гидроль и этиловый спирт.

Рассыпанные или пролитые реактивы удаляют, а место, где они нахо­дились, промывают или протирают тампонами, смоченными водой или спиртом.

Азопирам горюч, так как в его состав входит спирт.

Амидопириновая проба

Пипеткой наносят реактив ( 1 % раствора амидопирина ) на поршень и в цилиндр шприца, а через него в иглу. Если после предварительных этапов ПО осталась кровь, происходит немедленное окрашивание реакти­ва в сине-зеленый цвет (положительная проба). Окрашивание, по­явившееся позже,чем через 2 мин., не учитывается.

Фенолфталеиновая проба

С помощью этой пробы можно проверить, как промыты шприцы от моющего раствора. Вымытые детали шприца протирают ватой, смоченной 1% спиртовым раствором фенолфталеина. При наличии остатков моющего раствора в течение 30 секунд появляется сине-фиолетовое окрашивание. Если проба положительная, следует повторить промывание под холодной водой.

Примечание: при использовании моющих средств "Прогресс", "Биолог" фенолфталеиновая проба не применяется.

You are here: